研域干貨：培養細胞樣品怎么處理？

樣本處理的方法：

1. 融解RIPA裂解液，混勻。取恰當量的裂解液，在運用前數分鐘內參加PMSF，使PMSF的終濃度為1mM。

2. 關于貼壁細胞：去除培養液，用PBS、生理鹽水或無血清培養液洗一遍(假如血清中的蛋白沒有干擾，能夠不洗)。依照6孔板每孔參加150-250微升裂解液的份額參加裂解液。用槍吹打數下，使裂解液和細胞充沛觸摸。一般裂解液觸摸細胞1-2秒后，細胞就會被裂解。

3. 充沛裂解后，10000-14000g離心3-5分鐘，取上清，即可進行后續的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。

關于安排樣品：

1. 把安排剪切成細微的碎片。

2. 融解RIPA裂解液，混勻。取恰當量的裂解液，在運用前數分鐘內參加PMSF，使PMSF的*終濃度為1mM。

3. 依照每20毫克安排參加150-250微升裂解液的份額參加裂解液。(假如裂解不充沛能夠恰當添加更多的裂解液，假如需求高濃度的蛋白樣品，能夠恰當減少裂解液的用量。)

4. 用玻璃勻漿器勻漿，直至充沛裂解。

5. 充沛裂解后，10000-14000g離心3-5分鐘，取上清，即可進行后續的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。

6. 假如安排樣品自身非常細微，能夠恰當剪切后直接參加裂解液裂解，經過強烈vortex使樣品裂解充沛。然后同樣離心取上清，用于后續試驗。直接裂解的長處是比較方便，不用運用勻漿器，缺陷是不如運用勻漿器那樣裂解得比較充沛。