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                      核酸提取、PCR、熒光定量PCR常見問題解答

                      發布時間: 2010/5/26  點擊次數: 1938次
                      提 供 商: 研域(上海)化學試劑有限公司 資料大?。?/td>
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                      相關產品:
                      詳細介紹:

                      *部分 核酸DNA和RNA提取常見問題分析

                      1.       RNAfixer的工作原理?

                      浸入組織,抑制RNase的活性。運輸方便,是非液氮類的一種樣品儲存液。

                      2.       對于內源RNase豐富的組織和樣品,如何消除RNase?

                      可以在提取時候多加裂解液,比如4:1等。

                      3.       TRIpure and RNApure區別?

                      胍鹽類的裂解液一樣,RNApure附加有離心柱,和漂洗液,是Kit。

                      TRIpure只是裂解液。

                      4.       凝血的gDNA和RNA的提取與新鮮血的提取不同?

                      需加一個分離柱(separate column)分開凝血。

                      5.       microRNA提取和定量?

                      過2次離心柱,得到200bp一下的小RNA。可以測定OD定量。

                      6.       血清,血漿,血液RNA提取的區別?以及Viral RNA提取的方法?

                      液體類樣品RNA提取用TRIpure LS。一般血清、血漿是無細胞樣品,含游離的RNA,量比較少,建議加Carrier RNA在提取時候。

                      病毒RNA提取加Carrier RNA在提取時候,BioTeke有專門的病毒RNA提取試劑盒。

                      7.       通用植物RNA提取常見問題:蛋白質污染?

                      DNA污染-DNaseI消化(Kit does not provide it, please get it from other companies.)

                      8.       真菌RNA提取

                      可用RNApure 或者通用植物RNA提取Kit。

                      9.       DNA cleanup from gel and PCR, 區別?

                      膠回收含有一個溶膠液。多功能膠回收可以用于膠回收和PCR產物回收。

                      10.    土壤DNA提取優點?

                      無需要機械破碎樣品和過柱的純化方式,減少DNA的鍛煉和得率,達到實驗目的。

                       

                      第二部分PCR/RT-PCR常見問題解答

                      1.     二次PCR無目標產物,電泳孔道亮?

                      Template稀釋和重新設計引物

                      2.     microRNA的反轉錄問題?

                      microRNA反轉錄和普通的mRNA的反轉錄不一樣?,F在常見的microRNA反轉錄引物有2種,一個是step-loop結構;另外一種是3末端加polyA后,再用oligo(dT)逆轉錄。BioTeke有microRNA提取和2-step real-time PCR Kit。

                      3.     cDNA的合成(RT)電泳,以及cDNA第二鏈的合成問題?

                      2-5uLcDNA產物電泳有模糊條帶出現。第二鏈合成也有專門的試劑盒。BioTeke現在沒有此類產品。

                      4.     Power Mix擴增不成功因素?

                      產品或者引物或者目的基因的不表達。

                      5.     RT-PCR沒有擴增產物?

                      可能是引物,模版,產品等。

                       

                       

                      第三部分Real-time qPCR 常見問題分析

                      1.     做標準曲線時候,可否用2個不同體系濃度的稀釋分別對于內參和目的基因?

                      建議用同樣稀釋倍數做曲線,因為模板濃度會影響擴增效率。

                      2.     熔解曲線中,Tm不出現在80度左右?

                      擴增片段100bp左右的,一般應該出現在80度左右。如果低于此溫度出現,可能是模板降解。

                      3.     擴增曲線沒有Ct值,僅僅一條斜線?什么原因?

                      模板濃度過低或者模板降解。

                      4.     如果內參和目標基因表達量差別比較大,也就是目的基因的表達量少,

                         Ctcon=15,Cttarget=38,可否應用?

                      可以用于數據分析。因為表達量低,從而用過高模板進行擴增,從而同內標的模板不同,反而會增大數據統計的誤差。

                      5.     引物濃度可否是50nM,是否太低?

                      如果擴增曲線和熔解曲線比較好,這個濃度當然可以。如果更低,擴增結果好的情況下,同樣可以運用。

                      一句話,所有的模板、引物等濃度盡量不要用高的,會影響擴增效率。

                      6.     miRNA多個擴增時候,如果一個的擴增效果比較,其它熔解曲線不止一個峰,如何解決?

                      Primer對于miRNA是專一的。所以重新設計引物是不可取的。那么只能是提高Tm或者更換mastermix等。反應體系會影響反應產物的。

                      7.     相對定量方法,如果用Ct值比較,是各個樣品平均后在2delt Ct還是分別2 delt Ct在平均比較好?

                      相對定量的方法各有優缺點,主要取決于實驗的目的和材料的準備。如果是材料群體個體差異不大,這2種方法基本沒有很大的區別;如果是個體差異比較大,建議用雙標準曲線做。就是分別做內參和目的基因的標準曲線,分別帶入Ct值計算。

                      8.     熔解程序可否不加?

                      如果是擴增效果好,特異擴增,可以不加熔解程序;但建議做好加上。

                      9.     擴增反應體系5uL,擴增效率低,什么原因?

                      反應體系小,各種因素的影響比較大,比如引物濃度、模板濃度及其金屬離子等會影響擴增效率的。

                      10.  如何減少非特異性擴增的干擾?

                      設計一對好引物,提高primer的退火溫度,以及設定吸光溫度。


                       

                       

                       

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